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탐사 기금

유전자 표현 스펙트럼에서만 이상을 표현하는 유전자를 찾는 것은 포괄적이지 않다. 유전자 표현 스펙트럼에는 종종 많은 차이가 있는데, 그 중 일부는 하류의 면역생물반응일 수도 있고, 일부는 실수나 개인차이 (특히 수량이 적을 경우) 일 수도 있고, 나머지는 고려할 가치가 있을 수도 있다.

또한 질병 취약 유전자의 표현 자체는 변하지 않고 다른 유전자를 조절하여 작용하는 경우도 있다. 따라서 병원성 유전자를 찾는 것은 여러모로 시작해야 한다.

만약 나의 관점에 무슨 오류가 있다면, 지도해 주십시오. 고마워, 아주 좋은 형제. 나의 첫 번째 단계는 단지 표현 스펙트럼을 바꾸는 것일 수 있다. 만약 내가 이 일을 할 기회가 있다면, 네가 말했듯이, 나는 모든 방면에서 고려해야 한다. 나의 현재 생각은 스펙트럼을 표현하는 유전자 칩 기술을 이용하여 환자와 정상인의 유전자 표현 스펙트럼의 차이에 대한 전반적인 정보를 만드는 것이다. Maxon 이 말했듯이, 새로운 질병 관련 유전자를 찾는 것은 있을 수도 있고 없을 수도 있다. 나는 적어도 한 가지 측면이라고 생각한다. 내가 지금 생각할 수 있는 것은 자신의 생각을 정리하고 이 일을 잘 하는 것이다. 몇 가지 질문이 더 있습니다.

1. 예를 들어, 한 문장 중 1 1 18 개의 유전자를 선택해 연구를 진행했습니다. 알려진 유전자, 알려진 서열, 알 수 없는 유전자 등으로 나뉜다. BLAST 를 통해, 나는 그들이 어떻게 유전자 라이브러리 (전세포 mRNA 역전사) 에서 선별되었는지 이해할 수 없다. 아니면 다른 곳에서 찾았나요? ), 직접 시퀀싱처럼 보입니다. 어떻게 유전자 풀에서 이 유전자들을 찾아 (분리) 하나하나 서열분석할 수 있을까요?

2. BLAST 사용 방법 ? 예를 들어, 같은 문장 안에서 이미 확정된 1 1 18 소량세포 표현 스펙트럼의 유전자 서열 찾기 방법? 설명 좀 해주실래요? 대단히 감사합니다!

너는 한 가지 문제를 알아차렸니? 유전자 칩은 알려진 유전자나 서열만 감지할 수 있지만, 알 수 없는 것은 아무것도 할 수 없다. 앤드류는 옳았지만, 칩에 들어 있는 유전자의 수는 유전자 연구가 깊어짐에 따라 증가했다. 일반 연구의 경우, 주요 알려진 채널은 기본적으로 포함될 수 있다. 조언해 주셔서 감사합니다. 누구든지 위의 질문에 대답 할 수 있습니까? 나는 아직도 이해하지 못한다. 하루 동안의 자료를 보았지만 아직 이해하지 못했다.

나는 묻고 싶다: 만약 내가 정상인으로부터 칩 (1 1 18 유전자 포함) 을 맞춤화한다면, 환자의 cDNA 샘플과의 교잡에서 유전자 표현이 인하되거나 표현되지 않는 것을 발견한 이유는 무엇인가? 정말 표정이 없나요?

감사합니다. 감사합니다. 샘플이 일치합니까? 혈액 세포와 같은 세포 서브 세트는 비교 가능합니까?

대조가 있습니까? 샘플은 무작위 표본이고, 소량 세포는 동질의 내피세포이다. 통제에 관해서는, 당신은 전사의 음의 통제, 양수 통제 또는 내부 통제를 말하는 것입니까?

나는 아는 것이 매우 적어서 저급한 실수를 범할 수도 있다. 당신의 건의를 주세요. 실험과 DNA 칩의 오차 외에도 환자 cDNA 샘플과의 교잡에서 유전자 하향 조절 또는 무표현이 발견되어 RT-PCR 로 검증해야 한다. 그 표현이 하향 조정되거나 표현되지 않는 것은 상류 유전자에 의해 조절될 수도 있고, 무의미한 돌연변이와 같은 유전자 자체의 구조가 바뀌었을 수도 있으며, 표현의 감소를 감지할 수 있다. 이 유전자들은 RT-PCR 에 의해 확인된 후, 이 유전자들이 구조적 이상이 있는지 확인하기 위해 서열분석을 해야 한다. 역장과 전우들의 매일의 도움으로, 나는 현재 신청한 학과에 대해 아무것도 알지 못하고 자연과학기금 신청서 작성을 마쳤다. 내일까지 우리는 모두의 땀과 지혜를 응결시킨 신청이 곧 나올 것이다. 요즘 당신의 도움에 진심으로 감사를 표하고 싶습니다. 이런 앱을 쓴 것은 이번이 처음이지만, 많은 것을 배웠고, 좋은 친구들을 많이 사귀었다. 비록 거의 불가능했지만. (윌리엄 셰익스피어, 햄릿, 친구명언)

나는 이미 이 신청서의 본문을 첨부했다. 관심 있는 친구가 보고 가치 있는 의견을 제시해 주길 바란다. 이런 과제는 할 가치가 있다고 생각하기 때문이다. 비록 우리가 할 수 있는 기회와 능력이 없을 수도 있기 때문이다.

다시 한번 감사드립니다!

884 1 1-.doc (76.5k) 신청 성공을 축하합니다! ! 역장의 매일의 지적에 감사드리며, 여러분 동지에게도 감사드립니다.

최근 과학연구기금이 신고하기 시작하면서 사장이 긴급히 프로젝트를 신청했다. 방금 재단에 접촉했기 때문에 역장과 여러분 동지에게 물어보고 싶습니다.

현재 1 희귀한 단일 유전자 질환 (간질) 을 수집했는데 국내에는 아직 임상과 기초보도가 없다. 혈액 샘플 채취를 포함한 임상 작업이 이미 완료되었다.

KLOC-0/998 년 이후 발병유전자는 이미 포지셔닝되고 복제되었지만 유전적 이질성이 있어 같은 발병유전자의 돌연변이점도 다르다. 여러 편의 문장' 자연 유전' 등 권위 잡지에 게재됐다. 최근 연구에 따르면, 아직 다른 미지의 발병 유전자가 있다는 것을 보여준다.

3 협력 실험실은 병을 일으키는 유전자를 성공적으로 포지셔닝하고 복제한 경험이 있다.

우리가 신청한 목적은 병을 일으키는 유전자를 찾아 복제하는 것이고, 새로운 병을 일으키는 유전자를 발견할 가능성이 있다.

나는 너에게 묻고 싶다:

1 현재 임상자료로만 신청할 수 있나요?

2 또 어떤 일을 해야 합니까?

그렇다면 신청 실패의 가능한 원인은 무엇입니까?

감사합니다, 당신의 가르침을 기대합니다! 감사합니다. 만약 단일 유전자병이라면, 네가 수집한 가계에 달려 있다. 또 다른 문제는 당신의 임상 진단이 정확한지 아닌지입니다. 저는 임상이 아닙니다. 이 임상진단은 큰 의미가 있습니다. 이들 중 일부가 잘못 진단되거나 분류되면 질병 유전자 단일 유전자 질환을 발견하지 못할 가능성이 높다. 이 방면의 기술 전략은 매우 성숙해서 참고할 수 있는 문서가 많다. 국내에도 많은 연구기관이 있다. 유전자 SNP 와 질병 사이의 관계를 연구하고 싶습니다. 외국에는 두 가지 링크가 있다는 보도가 있다. 그렇다면 RFLP 분석이나 SNP 분석을 해야 할까요? 영웅들, 저는 최근에 X-체인 유전가족의 질병 관련 유전자를 그리고 있습니다. 지금 나는 이미 표기 (STR) 로 게놈의 두 부위를 스캔했지만, 나는 연쇄 분석에서 어려움을 만났다. 나는 연계 (버전 5. 1) 를 사용한다. 중성 체인과 상 염색체 체인의 유전 매개 변수 간의 차이점을 분석하고 싶습니다. 여러분의 지적을 기대합니다. 대단히 감사합니다! 유전자 SNP 와 질병 사이의 관계를 연구하고 싶습니다. 외국에는 두 가지 링크가 있다는 보도가 있다. 그렇다면 RFLP 분석이나 SNP 분석을 해야 할까요?

RFLP 는 최초의 유전 마커 (1 세대) 입니다. 유전학의 발전과 시퀀싱 단편이 계속 늘어남에 따라 2 세대와 3 세대 유전자 마커가 나타났다. 효소 소화를 통해 RFLP 를 분석하는 이 방법은 간단하고 저렴하지만 특이성이 나쁘고 탈락하기 쉽다. SNP 포지셔닝은 명확하고 비교적 비싸며 시퀀싱, 스냅샷, 형광 프로브, SNP 칩 등을 통해 분석할 수 있습니다.

구체적인 RFLP 분석 또는 SNP 분석을 통해 연구 목표와 경제력을 살펴볼 수 있습니다. Verygood, 작은 시퀀싱 (스냅샷) 을 소개해 주시겠습니까?

최근에 유전자와 질병의 관계를 시험하고 싶다. 많은 엑손 (20), 다른 질병에도 돌연변이 핫스팟 (9, 1 1, 13, 17 엑손) 이 있었다 모든 엑손 시퀀싱을 해야 하나요? 코우 단 은 썼다:

Verygood, 작은 시퀀싱 (스냅샷) 을 소개해 주시겠습니까?

최근에 유전자와 질병의 관계를 시험하고 싶다. 많은 엑손 (20), 다른 질병에도 돌연변이 핫스팟 (9, 1 1, 13, 17 엑손) 이 있었다 모든 엑손 시퀀싱을 해야 하나요?

Snapshot 은 SNP 가 포함된 DNA 템플릿을 증폭한 다음 PCR 제품을 정제하고 ddNTP 와 형광이 다른 중간 프로브를 첨가하는 작은 시퀀싱 반응입니다. (중간 프로브는 SNP 의 20 BP 안팎의 올리고 뉴클레오티드 서열이며, 프로브와 ddNTP 는 ddNTP 가 결합된 ddNTP 이기 때문에 템플릿 서열에 따라 결합된다.

이 방법은 프로브에 대한 요구 사항이 낮은 알려진 SNP 등위 유전자의 확인에 적용됩니다. 그러나 작업 단계가 많아 대규모로 적용하기가 어렵습니다 (ABI3 100 시퀀서 시리즈와 같이 모세관 시퀀싱을 사용할 때 상대적으로 작업량이 적음).

유전자와 질병의 관계를 감지하고, 엑손 (20) 이 많고, 다른 질병에는 돌연변이 핫스팟 (9, 1 1, 13,/Kloc-0) 이 있다 먼저 이 유전자좌들을 연구하는 것이 좋습니다. 물론, 유전자 서열 가 짧다면 직접 서열을 해독할 수도 있다. 현재 발견된 SNP 나 돌연변이는 예상 값의 약 2% 에 불과하기 때문이다.

행운을 빕니다. 감사합니다. 아주 좋습니다.)

요즘 논문 답변에 바쁘다. 나는 이 방면에서 완전히 초심자이지만, 사장은 내가 혁신을 원한다고 말했고, 학우들이 나에게 내놓은 이 생각이다.

현재 DNA 를 추출하여 유전자형을 진행했다. 하지만 시퀀싱을 통해 확인하고 싶습니다. 위에서 언급 한 스냅 샷은 소규모 시퀀싱입니다. 나는 이미 돌연변이 부위를 확정했고, 단편은 약 300bp 이다. 전부 정렬할 수 있을까요?

또한, 모든 샘플을 시퀀싱하거나 단지 소수의 잡합자와 순합자를 선택하여 증명할 수 있습니까? 이 정보는 어디서 도입한 것입니까? 저는 아직 초심자입니다. (아무 일 없이 주위를 둘러보며 이렇게 썼습니다.

대단히 감사합니다:)

요즘 논문 답변에 바쁘다. 나는 이 방면에서 완전히 초심자이지만, 사장은 내가 혁신을 원한다고 말했고, 학우들이 나에게 내놓은 이 생각이다.

현재 DNA 를 추출하여 유전자형을 진행했다. 하지만 시퀀싱을 통해 확인하고 싶습니다. 위에서 언급 한 스냅 샷은 소규모 시퀀싱입니다. 나는 이미 돌연변이 부위를 확정했고, 단편은 약 300bp 이다. 전부 정렬할 수 있을까요?

또한, 모든 샘플을 시퀀싱하거나 단지 소수의 잡합자와 순합자를 선택하여 증명할 수 있습니까? 이 정보는 어디서 도입한 것입니까? 나는 아직 초심자: (

300bp 만 있으면 샘플이 많지 않으니 직접 서열을 분석하는 것이 낫다. 알려진 SNP 유전자형을 식별할 수 있을 뿐만 아니라 보고되지 않은 것도 발견할 수 있기 때문이다. 즉, 모든 샘플을 시퀀싱해야 한다는 것이다. (알버트 아인슈타인, Northern Exposure (미국 TV 드라마), 예술명언)

알려진 SNPs 만 유전자형으로 분류하려면 스냅샷법, 물론 RFLP 를 사용할 수 있지만 특이성이 떨어진다. 결과 스트립은 반드시 대상 SNP 의 다른 대립 유전자와 관련이있는 것은 아니며 염색체의 다른 영역으로 절단 될 수 있습니다.

이 방면에는 일정한 자료가 없어서, 한 후에야 점차 이해하게 되었다. 현지 조건에 따라 어떤 기술을 채택해야 하는가. Verygood 는 다음과 같이 썼습니다

유전자와 질병의 관계를 감지하고, 엑손 (20) 이 많고, 다른 질병에는 돌연변이 핫스팟 (9, 1 1, 13,/Kloc-0) 이 있다 먼저 이 유전자좌들을 연구하는 것이 좋습니다. 물론, 유전자 서열 가 짧다면 직접 서열을 해독할 수도 있다. 현재 발견된 SNP 나 돌연변이는 예상 값의 약 2% 에 불과하기 때문이다.

감사합니다, 아주 좋은 선생님. 제가 연구한 유전자 코드영역 2930bp, mRNA 5084 BP, 유전자 전장 80kb 입니다. 직접 서열을 해독할 계획이었지만 환자군은 18 건 (파라핀), 대조군은 20 건 (외주혈 DNA 는 어떠신가요? ), 비용은 60,000 이 될 수 있습니다! ! ! 그래서 지금 저는 PCR-SSCP 와 비정상적인 밴드 시퀀싱으로 바꾸고 싶습니다. 동의하세요? Verygood 는 다음과 같이 썼습니다.

300bp 만 있으면 샘플이 많지 않으니 직접 서열을 분석하는 것이 낫다. 알려진 SNP 유전자형을 식별할 수 있을 뿐만 아니라 보고되지 않은 것도 발견할 수 있기 때문이다. 즉, 모든 샘플을 시퀀싱해야 한다는 것이다. (알버트 아인슈타인, Northern Exposure (미국 TV 드라마), 예술명언)

알려진 SNPs 만 유전자형으로 분류하려면 스냅샷법, 물론 RFLP 를 사용할 수 있지만 특이성이 떨어진다. 결과 스트립은 반드시 대상 SNP 의 다른 대립 유전자와 관련이있는 것은 아니며 염색체의 다른 영역으로 절단 될 수 있습니다.

이 방면에는 일정한 자료가 없어서, 한 후에야 점차 이해하게 되었다. 현지 조건에 따라 어떤 기술을 채택해야 하는가.

시퀀싱 후 돌연변이를 감지하는 소프트웨어는 무엇입니까? 다른 통계 분석에 관한 전문 생체통계학 책이 있습니까? 아니면 그냥 평범한 통계일까요? Coldant 에 보내기:

사전 조사, 너의 방법은 실행 가능해야 한다.

할 일이 없다:

시퀀싱 후 주로 서열 비교를 통해 돌연변이를 선별하여 Blast 를 통해 할 수 있다. 그러나 돌연변이인지 아닌지 신중히 확인하고 샘플을 확대해 분류 연구를 해야 한다. 질병 관련 연구에 대하여 너의 병례와 대조가 너무 적다. 일반 국내 저널도 200 ~ 200, 외국 저널은 약 400 ~ 500 ~ 500 이다. 일류 잡지는 보통 최소한 1000 부터 1000 까지입니다. 자금이 부족해서 시퀀싱을 할 수 없고 알려진 사이트를 직접 선택하세요. 이 유전자는 많은 질병과 관련이 있기 때문에, 이 유전자는 매우 보수적이며, 아마도 당신이 연구하고 있는 질병과 관련이 있을 것입니다. 관련이 없더라도 언제든지 나이, 성별, 질병의 위험 요소 (즉 디지털 게임) 로 문장 종합 분석을 할 수 있다.

질병 관련 유전자를 찾는 SNP 는 현재 주로 직접 시퀀싱 (조직이 아닌 외주혈에서 추출한 DNA) 을 통해 환자와 정상인 (병이 없는 사람) 의 유전자 서열 비교를 통해 SNP 를 찾고 있다. Verygood 가 언급 한 폭발은 실제로 적용되지 않습니다.

대상 SNP 가 있는 영역에 대해 PCR 길이가 약 500bp 인 한 쌍의 프라이머 1 을 설계할 수 있습니다. 또한 프리미어1적용 영역에 한 쌍의 프리미어 2 를 설계했습니다. 프라이머 2 의 프라이머 중 하나의 3' 말단 염기는 대상 SNP 부위의 정상 염기와 상호 보완되어야 하기 때문에 환자가 이 부위에서 돌연변이를 일으키면 프라이머 2 의 프라이머 쌍이 증폭되지 않는다. 또한 프라이머 2 와 프라이머 1 사이의 거리는 최소한 100 BP 이고 프라이머 2 의 생성물은 200 BP 보다 큽니다. 이렇게 하면 두 쌍의 프라이머가 동시에 PCR 반응에 투입될 때 네 개의 조각을 얻을 수 있습니다 (프라이머를 설계할 때 전기 영동을 구분할 수 있도록 길이가 달라야 함). 대상 SNP 가 있는 개체는 세 개의 조각밖에 없습니다. 전기 영동을 통해 이 개인에 돌연변이가 있는지 확인할 수 있습니다.

이 방법의 구체적인 이름을 나는 잊어버렸다. 당신을 도울 수 있기를 바랍니다. 맥슨은 이렇게 썼습니다.

질병 관련 유전자를 찾는 SNP 는 현재 주로 직접 시퀀싱 (조직이 아닌 외주혈에서 추출한 DNA) 을 통해 환자와 정상인 (병이 없는 사람) 의 유전자 서열 비교를 통해 SNP 를 찾고 있다. Verygood 가 언급 한 폭발은 실제로 적용되지 않습니다.

대상 SNP 가 있는 영역에 대해 PCR 길이가 약 500bp 인 한 쌍의 프라이머 1 을 설계할 수 있습니다. 또한 프리미어1적용 영역에 한 쌍의 프리미어 2 를 설계했습니다. 프라이머 2 의 프라이머 중 하나의 3' 말단 염기는 대상 SNP 부위의 정상 염기와 상호 보완되어야 하기 때문에 환자가 이 부위에서 돌연변이를 일으키면 프라이머 2 의 프라이머 쌍이 증폭되지 않는다. 또한 프라이머 2 와 프라이머 1 사이의 거리는 최소한 100 BP 이고 프라이머 2 의 생성물은 200 BP 보다 큽니다. 이렇게 하면 두 쌍의 프라이머가 동시에 PCR 반응에 투입될 때 네 개의 조각을 얻을 수 있습니다 (프라이머를 설계할 때 전기 영동을 구분할 수 있도록 길이가 달라야 함). 대상 SNP 가 있는 개체는 세 개의 조각밖에 없습니다. 전기 영동을 통해 이 개인에 돌연변이가 있는지 확인할 수 있습니다.

이 방법의 구체적인 이름을 나는 잊어버렸다. 당신을 도울 수 있기를 바랍니다.

허허, 내 말은 blast 로 서열을 쉽게 비교할 수 있다는 거야. 물론, applied biosystems 는 더 좋은 소프트웨어를 가지고 있지만, 해당 기기를 사지 않으면 얻기가 어렵다.

표본 수에 관해서는 많을수록 좋다. 상대적 위험도가 2 인 발병 부위의 경우 1000 건의 병례 대비 검사 효율이 100% 에 달하며, 검사 효율성은 병례 수가 감소함에 따라 감소한다. 하지만 초기 연구에 대해서는 그 장소가 질병 연구와 관련이 있는지는 분명하지 않기 때문에 대규모 투입은 무익으로 이어질 수 있다.

참고용으로 제공하다. 오늘 지강은 나에게 직접 샘플을 시퀀싱하여' 풀' 을 만들 것을 제안했다. " 시험을 위해 돈을 절약하다. 그들의 첫 번째 제안은 정상 환자와 환자에게 각각 1 의' 풀' 을 형성한 다음 회사의 TAG MAN (신기술) 으로 SNP 를 대규모로 검사하는 것이었지만, 나는 환자 샘플이 많지 않았다. 그래서 우리는 단지 그것을 정렬하기만 하면 됩니다.

이것 좀 볼 수 있어요? 만약 내가 25 명의 환자를 6 개의' 풀' 로 나누면, 순서를 정하고 다시 분석할 수 있습니까?

미리 감사 드립니다. 맥슨은 이렇게 썼습니다.

질병 관련 유전자를 찾는 SNP 는 현재 주로 직접 시퀀싱 (조직이 아닌 외주혈에서 추출한 DNA) 을 통해 환자와 정상인 (병이 없는 사람) 의 유전자 서열 비교를 통해 SNP 를 찾고 있다. Verygood 가 언급 한 폭발은 실제로 적용되지 않습니다.

대상 SNP 가 있는 영역에 대해 PCR 길이가 약 500bp 인 한 쌍의 프라이머 1 을 설계할 수 있습니다. 또한 프리미어1적용 영역에 한 쌍의 프리미어 2 를 설계했습니다. 프라이머 2 의 프라이머 중 하나의 3' 말단 염기는 대상 SNP 부위의 정상 염기와 상보적이어야 하기 때문에 환자가 이 부위에서 돌연변이를 일으키면 프라이머 2 의 프라이머 쌍이 증폭되지 않는다. 또한 프라이머 2 와 프라이머 1 사이의 거리는 최소한 100 BP 이고 프라이머 2 의 생성물은 200 BP 보다 큽니다. 이렇게 하면 두 쌍의 프라이머가 동시에 PCR 반응에 투입될 때 네 개의 조각을 얻을 수 있습니다 (프라이머를 설계할 때 전기 영동을 구분할 수 있도록 길이가 달라야 함). 대상 SNP 가 있는 개체는 세 개의 조각밖에 없습니다. 전기 영동을 통해 이 개인에 돌연변이가 있는지 확인할 수 있습니다.

이 방법의 구체적인 이름을 나는 잊어버렸다. 당신을 도울 수 있기를 바랍니다.

오, 감사합니다. 내가 관련 문헌에서 본 것은 두 개의 유인물 (돌연변이형과 비돌연변이형) 을 설계한 것이고, 다른 반의유인물은 모두 같다. 정상 대조군이 설계한 유인물은 네가 말한 PROMER2 와 매우 비슷하다. 나는 내가 왜 이렇게 하는지 알고 싶다. Verygood 는 다음과 같이 썼습니다.

할 일이 없다:

시퀀싱 후 주로 서열 비교를 통해 돌연변이를 선별하여 Blast 를 통해 할 수 있다. 그러나 돌연변이인지 아닌지 신중히 확인하고 샘플을 확대해 분류 연구를 해야 한다.

결론을 내리는 것은 불가능하다는 것을 확정하고, 단지 전망을 제시할 뿐이다. 시퀀싱 후 SEQUENCEMAN 소프트웨어로 분석할 수 있지만, 관련 문헌에 따르면 RFLP 를 하나 더 추가하고 싶습니다. 이 분석에는 더 많은 데이터 지원이 있는 것 같다. 코우 단 은 썼다:

오늘 지강은 나에게 직접 샘플을 시퀀싱하여' 풀' 을 만들 것을 제안했다. " 시험을 위해 돈을 절약하다. 그들의 첫 번째 제안은 정상 환자와 환자에게 각각 1 의' 풀' 을 형성한 다음 회사의 TAG MAN (신기술) 으로 SNP 를 대규모로 검사하는 것이었지만, 나는 환자 샘플이 많지 않았다. 그래서 우리는 단지 그것을 정렬하기만 하면 됩니다.

이것 좀 볼 수 있어요? 만약 내가 25 명의 환자를 6 개의' 풀' 로 나누면, 순서를 정하고 다시 분석할 수 있습니까?

미리 감사 드립니다.

허허, 너도 지강에서 한 거야? 그들은 프로브를 사용하여 SNP 를 감지하는 것 같다. 프로브의 정확성은 직접 시퀀싱만큼 좋지 않다고 들었습니다. 그들이 너에게 어떤 건의를 했는지 모르겠다? :) 맥슨은 다음과 같이 썼다.

질병 관련 연구에 대하여 너의 병례와 대조가 너무 적다. 일반 국내 저널도 200 ~ 200, 외국 저널은 약 400 ~ 500 ~ 500 이다. 일류 잡지는 보통 최소한 1000 부터 1000 까지입니다. 자금이 부족해서 시퀀싱을 할 수 없고 알려진 사이트를 직접 선택하세요. 이 유전자는 많은 질병과 관련이 있기 때문에, 이 유전자는 매우 보수적이며, 아마도 당신이 연구하고 있는 질병과 관련이 있을 것입니다. 관련이 없더라도 언제든지 나이, 성별, 질병의 위험 요소 (즉 디지털 게임) 로 문장 종합 분석을 할 수 있다.

5555555, 하지만 나는 그렇게 많은 사건을 받을 수 없다. 경비가 제한되어 있다.

알려진 사이트를 직접 만드는 것은 무엇을 의미합니까? 게다가, 당신은 생체통계학 같은 책을 본 적이 있습니까? 참고해서 관련 분석을 할 수 있다고 들었어요. 상해의 어느 도서관이나 서점에 있습니까? 구체적인 방법은 잊어버렸다. 통계학은 주로 두 가지 유형의 T 검사와 X2 다형성 분석 방법을 가리킨다.

우선 가계 분석에 근거하여 주로 연쇄 불균형법을 채택한다.

둘째, maxon 이 말했듯이, 주로 T 검사와 X2 입니다. 그러나 대조가 표본 집단을 대표할 수 있는지 주의해야 한다. 초기 문헌에는 샘플링 오류로 인한 위양성 결과가 즐비하여 점차 사람들의 중시를 불러일으켰다. 허무하게 돌아서서 썼다.

허허, 너도 지강에서 한 거야? 그들은 프로브를 사용하여 SNP 를 감지하는 것 같다. 프로브의 정확성은 직접 시퀀싱만큼 좋지 않다고 들었습니다. 그들이 너에게 어떤 건의를 했는지 모르겠다? :)

아무 일도 하지 않는 일이 나와 닮아 더 많이 소통할 수 있을 것 같아요!

강회사는 그룹당 25 명, 대조군 25 명 (25 명만 수집), 4 명 그룹이' 풀' 을 형성해 PCR 로 외현자를 증폭시켜 직접 서열을 해독했다고 제안했다. (돈 절약)

심능회사는 각 환자가 직접 증강서열을 증강시켜 GenBank 와 비교할 것을 건의한다 (대조군 제외, 비용은 18000 원/10 건).

베이징 딩 과일 회사: PCR-SSCP, (정상, 그룹당 환자 25 명)

Verygood, maxon, 동지들과 상의해 보세요. 어떤 것이 가능할까요?

대나무에게 도움을 청하다. 코우 단 은 썼다:

아무 일도 하지 않는 일이 나와 닮아 더 많이 소통할 수 있을 것 같아요!

강회사는 그룹당 25 명, 대조군 25 명 (25 명만 수집), 4 명 그룹이' 풀' 을 형성해 PCR 로 외현자를 증폭시켜 직접 서열을 해독했다고 제안했다. (돈 절약)

심능회사는 각 환자가 직접 증강서열을 증강시켜 GenBank 와 비교할 것을 건의한다 (대조군 제외, 비용은 18000 원/10 건).

베이징 딩 과일 회사: PCR-SSCP, (정상, 그룹당 환자 25 명)

Verygood, maxon, 동지들과 상의해 보세요. 어떤 것이 가능할까요?

대나무에게 도움을 청하다.

저는 12 를 비교하는 30 건이 있습니다. 남의 건의는 직접 서열을 분석하는 것이다. 시퀀싱 후 RFLP 를 만들고 싶습니다. 논문을 써야 하기 때문에 내용이 없어서는 안 됩니다.